中国现代教育装备
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 实验室建设  
斑马鱼视网膜电图测量系统构建
来源:《中国现代教育装备》杂志 时间:2021-4-14 18:06:37
  [导读]视网膜电图可用于评判视觉系统的发育、功能及病变,已成为眼科必备检查项目之一。目前已开发商用系统仅用于人类眼科检查和大的动物研究,无法用于斑马鱼视网膜功能测量。利用玻璃电极、四维度微操、LED光刺激模块及电生理放大器,搭建了适合于幼小斑马鱼视网膜电图测量的系统,系统具有高信噪比、适应性强、方便操作、实验成功率高等优点,将在斑马鱼视觉系统发育、遗传学研究等方面发挥积极的作用。

  视网膜电图(electroretinogram,ERG)是利用电子学技术放大、滤波、采集的在光刺激下视网膜及视觉通路产生的生物电信号,通过分析ERG信号的振幅、峰时、波形等,可判别视网膜及视觉通路的发育、功能与病变[1-2]。ERG是在光刺激诱导光感细胞产生的一组复合电位变化,其测量具有非创伤性、定量性和可重复性,在眼科疾病诊断、疗效评价、功能评价等方面具有重要作用,已成为医院眼科重要检查项目[3-4],在发育生物学和遗传学研究中,已成为检查视觉系统发育及功能的重要检测手段,作为科学研究的重要指标数据[5-7]。

  目前商用ERG系统已用于人类眼科检查和动物研究,但由于角膜接触电极过大、固定架无法安放斑马鱼等,使得现有系统无法应用于小动物如斑马鱼视觉功能的研究。斑马鱼具有体积小、发育周期短、单次产卵数高、结构和生理功能与哺乳动物高度相似等优点,尤其视觉系统发达,构造与人类视觉系统相似,使得斑马鱼成为探究人类眼科疾病的常用模式动物[8-9]。本文采用玻璃电极作为记录电极、LED作为刺激光源、电生理放大器记录生物电信号,以及特制的样品池搭建了适合于幼小斑马鱼视网膜电图测量的系统,目前国内尚未见有这样的系统,这将在斑马鱼视觉功能研究中发挥积极的作用。

  1 视网膜电图测量系统设计与构建

  2 实验测试与数据分析

  3 结果与讨论

  本文利用玻璃电极、四维度微操、LED光刺激模块及电生理放大器和特制样品池,搭建了ERG测量系统,并建立相应的实验操作方法,可以稳定的记录幼小斑马鱼视网膜电图信号。特制样品池方便移动和放置斑马鱼,玻璃电极可多维度自由移动接触斑马鱼角膜,光刺激模块波形可任意设置并与记录软件同步,电生理放大器可多参数调节,使得系统具有高信噪比、适应性强、方便操作、实验成功率高等优点,本实验将在斑马鱼视觉系统发育、遗传学研究等方面发挥积极的作用。

  实验中,如果斑马鱼幼虫扭动过大,系统会记录到不规则的伪波形,这是肌电信号而不是ERG波形。此时可用毛刷沾稍许麻醉剂刷在幼虫身上,待幼虫稳定即可记录稳定的有效信号,但应控制麻醉剂量,否则会造成其活性下降致死。如果光刺激时间太短,细胞电位不会由超极化向去极化的转变,波形中不会出现d波。

  为减少噪声、提高信噪比,样品池中电解液应尽量少,仅将吸水纸润湿即可;玻璃电极拉制时,尖端口径大小合适且不能出现裂纹;注入玻璃电极内的电解液中不能出现气泡,电极尖端应与斑马鱼角膜中央紧密结合;系统各个部件要良好接地,并置于法拉第笼中。

  如果体式显微镜配置红外相机和红外光源,则可减少电极接触角膜时照明光的影响;如果光刺激模块换为多色LED,系统将可开展不同颜色光刺激下视网膜功能研究;如果对样品池改造便于斑马鱼吸氧,系统将能开展成年斑马鱼视网膜电图测量。系统将持续进行完善。

  参考文献

  [1] Neal S Peachey, Gastone G Celesia. Encyclopedia of the Neurological Sciences (Second Edition)[M].Electroretinogram (ERG),2014:1107-1109.

  [2] Mathias W Seeliger, Albrecht Rilk& Stephan CF Neuhauss. Ganzfeld ERG in zebrafish larvae[J]. Documenta Ophthalmologica, 2002, 104: 57-68.

  [3] Steve Charles. Principles and Practice of ClinicalElectrophysiology of Vision. American Journal of Ophthalmology, 2007, 143(5):912-915.

  [4] Chhetri J, Jacobson G, Gueven N. Zebrafish-on the move towards ophthalmological research.[J] Eye, 2014(28):367-380.

  [5] Berghmans S, Butler P, Goldsmith P, et al. Zebrafish based assays for the assessment of cardiac, visual and gut function - potential safety screens for early drug discovery[J]. Journal of Pharmacological & Toxicological Methods,2008,58(1):59-68.

  [6] Kolesnikov AV, Kefalov VJ. Transretinal ERG recordings from mouse retina: rod and cone photoresponses[J]. Journal of Visualized Experiments, 2012,61:3424

  [7] Shanshan Yu, Chang Li, Lincoln Biswas, et al. CERKL gene knockout disturbs photoreceptor outer segment phagocytosis and causes rod-cone dystrophy in zebrafish[J]. Human Molecular Genetics, 2017,26(12):2335-2345

  [8] Kari G, Rodeck U, Dicker A P. Zebrafish: an emerging model system for human disease and drug discovery[J]. Clinical Pharmacology & Therapeutics,2007,82(1):70–80.

  [9] Chakraborty C, Hsu C H, Wen Z H, et al. Zebrafish: a complete animal model for in vivo drug discovery and development[J]. Current Drug Metabolism, 2009,10(2):116.

刘亚丰 吴颖 卢群伟 华中科技大学生命科学与技术学院


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